Доктор биологических наук, доцент Курбанова Инна Мусаевна

Фотосинтез. Механизмы повреждения и адаптации фотосистем;
Исследование клеточного и молекулярного механизма устойчивости растений при воздействии факторов стрессового повреждения (фотозадача, высокая температура, соленость, тяжелые металлы Al³⁺, Mn²⁺, Cd²⁺, Co²⁺, Ni²⁺, Zn²⁺, Cu²⁺);
Изучение характера стабилизации и адаптации мембранной системы хлоропластов с помощью ряда протекторов и стабилизаторов;
Исследование физико-химических свойств и регуляторного механизма макролактонных соединений, чувствительных к мембранам.

Действие Cu²⁺ на состояние пигментного фонда в хлоропластах было исследована при всех рН среды в течении 24, 48 и 72 часа экспозиции. В качестве протекторов использованы листья шалфея (Folia Salvia officinalis), корень солодки (Radix glycyrrhizae) и листья реликтового растения Danae racemos активность которых зависило от времени экспозиции. Результаты исследование инфрокрасных спектров свидетельствуют, что используемые экстракты имеющие фенолные соединения, а именно ОН-группы ассоциирующие валентными колебаниями ароматических (С-С) связями защищают пигменты от окислительного стресса. В сравнении с экстрактами шалфея и корни солодки, имеющийся в составе флавоноиды, биологическая активная композиция (БАК) на основе плюмбагина и большей степени Na-аскорбат нейтрализует  реактивные формы кислорода, сохраняя равновесие между окислительно-восстановительными реакциями в электрон транспортной цепи фотосистемы 2 (ЭТЦ ФС 2). Как показали флуоресцентные характеристики миллисекундной замедленной флуоресценции хлорофилла а (мсек ЗФ Хл а) повреждения метилвиологеном (МВ) фотосистема 2 (ФС 2) восстанавливается Na-аскорбатом. Восстанавливается реакция первичного разделения заряда на донорной стороне ЭТЦ перенос электрона на первичный хиноновый акцептор Q_A. Показано, что нарушение синтеза белка D₁ de novo инактивирует  реакционный центр (РЦ) ФС 2  и повреждают синтез новых центров. Это приводит к изменению флуорессентных свойств. Методом электрофорез ПААГ было выявлено, что в зависимости от действия метилвиологена и хлорамфеникола приводит к изменению белкового спектра. Было показано, что зоны белков между корреляционными изменениями и состояния ЭТЦ происходит увеличением стационарного уровня на индукционной кривой мсек ЗФ Хл а.
Основная цель проведения исследовательских работ заключается в исследовании механизма образования   открытых и закрытых полиеновых каналов, лежащих в липидных мембранах, с использованием определенных каналообразующих  структур  полиеновых антибиотиков (ПА).В лаборатории исследованы молекулярная динамика и физико-химические свойства ионных каналов с участием различных производных антибиотиков.В этом направлении большую роль играет изучение процесса пролиферации в клоногенных клетках под влиянием полиеновых антибиотиков и их производных. Среди которых под действием леворина и метилеворина нв клеточные культуры Hela и S6, этот процесс был остановлен. Впервые было отмечено 70% задержка процесса пролиферации клоногенных опухолевых клетокв присутствии  леворина А и его производных. Этот результат имеет научно-практическое значение в медицине и может привести к выявлению новых противораковых препаратов. Полученные результаты будут отражены в новых печатных работах. Кроме того, в настоящее время в различных клеточных культурах изучается влияние Амфотерицина и леворина и их производных  на ряд бактериальных и грибковых штаммов. Эта работа продолжается сотрудниками лаборатории.